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现将国家税务总局《关于国有企业职工因解除劳动合同取得一次性补偿收入征免个人所得税问题的通知》(国税发〔2000〕77号)转发给你们,并补充通知如下,请一并遵照执行。
一、其他企业和单位的职工因解除劳动合同取得的一次性补偿收入,暂比照国有企业职工取得补偿收入的个人所得税政策执行。
二、1999年我市职工年平均工资为14000元。以后年度职工年平均工资的数额,参照统计部门的数据,另行下文明确。
关键词:三苗同步;两点注射;技术;方法
中图分类号:S828 文献标识码:C
国家农业部的生猪重大动物疫病强制免疫计划中规定生猪必须进行强制免疫的病种是高致病性猪蓝耳病、猪口蹄疫、猪瘟。当前在周边地区动物疫情严峻的形势下,做好重大动物疫病防控工作是降低动物发生疫病的有效措施,是保障畜牧业健康发展的前提条件。近年来在基层动物防疫工作中,实行“分片包干、集中免疫、整村推进”的防疫方式时,一般都要分3个阶段进行,增加了动物防疫员的工作量,也导致强制免疫工作很难落实。因此为提高重大动物疫病免疫效果,降低动物防疫员的劳动强度和组织成本,把重大动物疫病强制免疫工作落到实处,通过多方试验用“三苗同步,两点注射”的免疫技术方法,经免疫后抗体效价测定,达到了国家农业部规定的免疫有效保护标准,取得了明显成效,现将该技术要点简述如下:
1猪重大动物疫病“三苗同步,两点注射”法的定义
猪重大动物疫病“三苗同步,两点注射”法是指在对农村散养户生猪进行免疫时,将国家要求强制免疫的生猪进行免疫的猪瘟,高致病性猪蓝耳病两种疫苗同时用猪瘟稀释液或高致病性猪蓝耳病疫苗稀释液稀释混合后,按免疫剂量要求一次性注射到猪耳后颈部一侧,而另外一侧注射口蹄疫疫苗。
2疫苗选择
猪口蹄疫疫苗要求使用合成肽疫苗,猪瘟疫苗要求使用脾淋苗,高致病性猪蓝耳病活疫苗要求使用弱毒疫苗。
3操作要点
3.1.疫苗稀释
疫苗稀释前应恢复到常温,稀释好的疫苗也应常温保存,并要求在2h内用完。
3.2 猪瘟疫苗稀释液稀释法
用猪瘟疫苗稀释液稀释猪瘟疫苗后,在稀释高致病性猪蓝耳病疫苗,稀释液与疫苗一定是等量稀释。
3.3高致病性猪蓝耳病疫苗稀释液稀释法
用高致病性猪蓝耳病稀释液稀释高致病性蓝耳苗后,再稀释猪瘟疫苗,稀释液与疫苗一定是等量稀释。
各稀释液和猪口蹄疫合成肽疫苗在使用前恢复到常温后,可降低免疫反应发生率。
3.4注射针头
大猪用12X30号,小猪使用12X25号针头,并确保达到深部肌肉注射。
3.5注射剂量
因在注射疫苗的过程中,疫苗会从针眼中流出一部分,因此在操作中可按说明书的使用剂量适当的增加注射0.1~0.2ml/头。
3.6保定和标记
对中大猪用保定钢索进行保定、对小猪徒手保定,确保注射部位和剂量准确;单圈头数多时,应用记号笔对已注射猪只进行记号,防止重注和漏注。
4注意事项
4.1严格消毒
注射器应事先做好消毒,注射部位要用酒精棉球消毒,进出每一户农户的防疫人员和保定索都要进行消毒。
4.2防止疫苗交叉抽取
注射针头和抽取疫苗针头不能混用。
4.3坚持“五不打”
即肥、孕、弱、病的猪只不能打。
4.4做好免疫反应救治
准备好肾上腺素(当出现疫苗反应时应及时使用),镇痛消炎药品(第2、3天出现反应时使用)。
4.5做好疫苗的冷链储运和使用
疫苗运输使用中严格太阳直射,确保稀释前和注射时的疫苗不失效。
4.6加强集中免疫后的补针工作
确保群体免疫密度常年保持在90%以上,必须对上述“五不打”、新生、新补栏的猪只进行定期补针。
4.7做好免疫效果监测
关键词:动物 动物免疫 注意事项
1、家禽免疫接种技术
1.1滴眼、滴鼻。这种方法适用于新城疫Ⅱ系、Ⅲ系、Ⅳ系疫苗、传染性法氏囊、弱毒毒疫苗、传染性支气管炎弱毒苗及传染性喉气管炎弱毒型疫苗的接种,对幼雏应用这种方法,可以避免疫苗病毒被毒源抗体中和。
1.2翼下刺种。此法适用于鸡痘疫苗、新城疫I系疫苗等的接种。
1.3羽毛囊涂擦。此法可用鸡痘疫苗的接种,但已少用。
1.4滴肛或擦肛。此法仅用于传染性喉气管炎的强毒型疫苗。
1.5皮下注射。马立克氏疫苗,宜用颈背皮下注射接种。各种油乳剂灭活疫苗也适用皮下注射法。
1.6肌肉注射。此法是把疫苗直接注射于肌肉内,禽霍乱弱毒菌苗或灭活菌苗以肌肉注射较好。此法作用迅速,剂量准确。新城疫I系苗肌肉注射免疫效果比滴眼、滴鼻好,灭活苗必须用注射法,不能口服或于滴眼、滴鼻。
肌肉注射一般按使用说明书稀释后,较小的禽只注射0.3毫升,成禽则每只注射0.5毫升。肌肉注射以胸部肌肉为好,应斜向前,以防刺入肝脏、心脏或胸腔内造成死亡,对较小禽尤其注意。
1.7饮水法。对于大群禽只(万只)逐只进行免疫接种费时费力,且不能于短时间内达到全群免疫。对于产卵期和产卵盛期的鸡群为避免骚扰禽群,常采用群体免疫法。群体免疫法中最常用,最易做的就是饮水法。饮水法免疫虽然省时省力,但由于种种原因会造成每只禽饮水的疫苗量不一,免疫效果参差不齐,疫苗效果往往不能产生足够的免疫力,不能抵抗较强毒力的毒株引起的疾病流行。
为使饮水免疫达到一定效果,必须注意以下几个问题:
1.7.1用于饮水法的疫苗必须是高效价的。且疫苗剂量加大2-3倍。
1.7.2稀释疫苗的饮水必须不含有任何使疫苗灭活的物质。
1.7.3饮水器具要充足,以保证所有禽只能在短时间内饮到足够的免疫量,饮水器具要干净,饮水前必须彻底清除铁锈、脏物等,以免降低疫苗效价。
1.7.4饮疫苗前停止饮水2-4小时,以便使禽只能尽快而又一致地饮用疫苗。第二天再以同样剂量和方法重复一次
1.7.5饮水中最好能加入0.1%的脱脂奶粉。
1.7.6稀释疫苗的用水量要适当。
1.7.7饮水法免疫接种间隔时间不要太长,一般2-3月进行一次。
1.8气雾法。此法是用压缩空气通过气雾法发生器使稀释疫苗形成直径1-10微米的雾化粒子,均匀地浮游于空气之中,随呼吸而进入禽体内以达到免疫。
气雾免疫应注意的问题有以下几个方面:
1.8.1疫苗必须是高效价的,而且通常应使用加倍的剂量。
1.8.2稀释疫苗应该用去离子水或蒸馏水,最好加入0.1%的脱脂奶粉或明胶。
1.8.3雾粒大小要适中,一般以喷出的雾粒中直径在1-10微米占70%以上为最好,雾粒过大,停留于空气中的时间短,易被粘膜阻止,不能吸入呼吸道;雾粒过小,则吸入后易被呼气时排出。
1.8.4气雾免疫房舍应密闭,减少空气流动,并应无直射阳光,保证舍内有适宜的温度与湿度。夜间气雾免疫最好,此时鸡群密集而安静,喷雾20分钟后打开门窗即可。
2、家畜接种
2.1滴鼻。如伪狂犬疫苗用于3日龄乳猪滴鼻。
2.2口服。如牛、羊口服猪2号布氏杆菌苗。注意口服菌苗时必须空腹,最好是清晨喂饲,服苗30分钟后,方可喂食。
2.3肌肉注射。选择合适针头,猪于耳后颈部肌肉注射,牛、马、羊等于颈中部肌肉注射。
2.4穴位注射。
2.4.1后海穴注射局部消毒后,于后海穴向前上方进针,刺入0.5-4厘米。根据畜体大小注意进针深度。
2.4.2风池穴注射局部剪毛、消毒后,垂直刺入1-1.5厘米。
2.5皮下注射。宜选择皮薄,被毛少,皮肤松驰,皮下血管少的地方。常选择的部位有家畜颈侧中部1/3部位皮下注射、尾根皮一注射,犬、猪背部的皮下注射。
2.6皮内注射。宜选择皮肤致密,被毛少的部位,马、牛宜在颈侧、尾根、肩胛中央,猪宜在耳根后,羊宜在颈侧或尾根部。对注射部位进行消毒,将针头与皮肤面呈15°刺入皮内0.5厘米左右注入药液。注射完毕,拔出针头,用消毒棉球轻压针孔,以避免药液外溢,最后涂以5%碘酊消毒。
2.7胸腔肺内注射。用于猪喘气病弱毒苗的免疫注射。猪胸腔肺内注射的部位是猪右侧,倒数第七肋骨至肩骨后缘3-5厘米处进针,针头进入胸腔有空感,回抽针发现无血或其他内容物,即可注入疫苗。
3、动物免疫接种后不良反应的处置
3.1免疫接种后如产生严重不良反应,应采用抗休克、抗过敏、抗炎症、抗感染、强心补液、镇静解痉等急救措施。
关键词:怒江州;猪注射免疫;“三苗同步、两点注射”
中图分类号:S858.28 文献标识码:B 文章编号:1007-273X(2014)06-0026-02
高致病性猪蓝耳病、猪瘟和猪口蹄疫是目前危害养猪业重要的动物疫病,对这几个疫病免疫程序的研究和推广也是近来兽医工作者所关注的重点。2007年下半年,高致病性猪蓝耳病纳入国家重大动物疫病管理后,生猪的强制免疫病种由以前的猪瘟、猪口蹄疫两种增加至三种,基层兽医的劳动量也随之增加,强制免疫工作落实艰难。针对这一实际问题,在原免疫程序的基础上,进行了高致病性猪蓝耳病和猪瘟、猪口蹄疫三种疫苗。在仔猪35~60日龄时“三苗同步,两点注射”的方法免疫实验推广。
现将猪重大动物疫病“三苗同步,二点注射”法操作要点及注意事项、实施方案介绍如下。
1 “三苗同步,两点注射”方法的定义
猪重大动物疫病实施“三苗同步,两点注射”方法是指在对农村散养户生猪进行免疫时,将国家要求强制免疫的猪瘟、高致病性猪蓝耳病两种疫苗同时用猪瘟疫苗稀释液或者高致病性猪蓝耳病疫苗稀释液稀释混合后,一次性注射到猪耳后颈部的一侧,而另外一侧注射口蹄疫疫苗,此方法可有效减轻动物防疫员的劳动强度。
2 疫苗选择
猪口蹄疫疫苗要求保存温度2~8 °C,合成肽疫苗;猪瘟疫苗要求保存温度-20 °C,脾淋苗;高致病性猪蓝耳病活疫苗要求保存温度-20 °C,弱毒活苗,所用疫苗均为政府统一采购疫苗。
3 操作要点
3.1 疫苗稀释
疫苗在稀释前应恢复到常温,稀释好的疫苗应在2 h内用完。
3.2 猪瘟疫苗
用猪瘟疫苗稀释液稀释猪瘟疫苗后,再稀释高致病性猪蓝耳病疫苗,稀释液与疫苗一定是等量稀释。
3.3 高致病性猪蓝耳病疫苗
用高致病性猪蓝耳病疫苗稀释液稀释高致病性猪蓝耳病疫苗后,再稀释猪瘟疫苗,稀释液与疫苗一定是等量稀释。
3.4 注射针头
大猪使用12×25号、小猪使用12×20号针头,并确保达到深部肌肉注射。
3.5 注射部位
注射部位应选择仔猪耳后1.5 cm的颈部两侧肌肉进行注射。
3.6 注射剂量
因在注射疫苗的过程中,疫苗会从针眼中流出一部分,因此在操作中可按说明书的使用剂量适当增加注射0.1~0.2mL/头。
3.7 保定和标记
对中、大猪用保定钢索进行保定,对小猪徒手保定,确保注射部位和剂量准确;单圈头数多时,应用记号笔对已注射猪只进行记号,防止重注和漏注。
4 注意事项
(1)严格消毒。注射器械应事先做好消毒,注射部位要消毒,进出每一农户的工作人员和保定器械都要进行消毒。
(2)防止疫苗交叉抽取。注射针头和抽取疫苗针头不能混用,严格防止交叉。
(3)坚持“五不打”。即肥、孕、幼、弱、病的猪只不能注射疫苗。
(4)做好免疫记录。入户注射时填写《云南省散养户免疫档案》和《免疫户口册》。免疫档案以组为单位按户编号,每户一页,每次入户免疫以“猪、牛、羊、禽”顺序依次填写存栏数,注明免疫数、疫苗生产企业。疫苗名称(可使用统一的代号)、疫苗批号、对未注射的进行备注;户口册加盖乡兽医站的公章,填写时畜主签字,方能有效,在乡兽医站建立免疫电子档案。
(5)做好疫苗的冷链储运管理使用。疫苗运输使用中严禁太阳直射,注射时恢复到常温后的疫苗无需再冷藏,只需在2 h内使用完。
(6)加强集中免疫后的补针工作。确保群体免疫密度常年保持在90%以上,必须对上述“五不打”、新生、新补栏的猪只进行定期补针。
[关键词]林蛙油;小鼠;免疫调节
[中图分类号] R-332 [文献标识码] A [文章编号] 1674-4721(2017)01(c)-0004-03
[Abstract]Objective To explore the effect of Oviductus ranae on the function of immunoregulation.Methods 240 mice were randomly divided into 6 groups of immune group,each group had 40 mice,each immune group was divided into low,medium and high dose group [334,667,1344 mg/(kg・BW)] and negative control group according to recommended oral dose (5,10,20 times) of Oviductus ranae 10 rats in each group.The mice were given intragastric administration according to volume of 0.2 ml/(10 g・BW),intragastric administration was given 1 time a day,and the immune indexes were measured after continuous intragastric administration of 30 d.Results The results of Oviductus ranae dose groups in comparison with the negative control group showed that proliferation and transformation of splenic lymphocyte were enhanced (P
[Key words]Oviductus ranae;Mice;Immunoregulation
林蛙油(oviductus ranae)又叫雪蛤油、蛤蟆油,特指中国林蛙长白山亚种雌哈蟆的输卵管。林蛙油具有生津润肺、益胃健脾、益精补肾等功效,其营养保健价值极高。现代医学研究表明,林蛙油具有增强免疫力、抗衰老、抗氧化、抗疲劳、调节血脂、抗焦虑等多种作用[1-5]。目前国内报道中关于林蛙油免疫调节作用的文献不少[6-8],但均局限于细胞免疫功能检测,对体液免疫功能检测报道不足。本实验通过细胞免疫和体液免疫等方面检测的全面研究,为评价林蛙油对小鼠的免疫调节作用提供实验依据。
1材料与方法
1.1受试物
林蛙油由黑龙江省五常市某营养品有限公司送检,受试物的成人每日口服推荐折合剂量为66.7 mg/(kg・BW)。
1.2动物
采用健康KM种小白鼠240只,雄性,体重18~22 g,SPF级,广西医科大学实验动物中心提供。动物实验使用许可证号:SYXK(桂)2011-0005。本动物试验经过广西壮族自治区疾病预防控制中心伦理审查委员会认可。
1.3主要仪器与试剂
实验主要仪器设备包括酶标仪(美国贝斯特960)、二氧化碳培养箱(精密科仪L5410-220)、电子分析天平(赛多利斯BS224S)、半自动生化分析仪(日立KY-2000)、显微镜(徕卡DM6000B)等。
实验主要试剂包括ConA(Sigma);MTT(Sigma);RPMI1640培养液(赛默飞世尔);YAC-1细胞(上海素尔生物科技有限公司);DNFB(天津市光复精细化工研究所,批号080908);印度墨汁(北京天佑达生物工程科技有限公司,批号12/2011);绵羊红细胞(SRBC)及补体(豚鼠血清):由本实验室制备等。