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行政担保书

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行政担保书范文第1篇

原发性血小板增多症是多能造血干细胞的克隆性疾病,是指血小板计数多在1000~3000×109/L的一种骨髓增殖性疾病,病变主要表现在巨核细胞.血小板系统,出血和血栓形成是发病和死亡的主要原因[1]。我科2008至今应用美国百特公司生产的CS3000血细胞分离机为65例原发性血小板增多症病人行血小板分离术,迅速减少血小板数量,改善症状取得了较好的疗效。

1 临床资料

65例中男38例,女27例,年龄28-91岁,均行血象,骨髓象检查, 均符合国内的诊断标准[2],患者均有不同程度的高粘滞血症,神智清楚。

2 方法

应用美国百特公司生产的CS3000血细胞分离机及一次性消耗管道,选择血细胞单采程序,ACD抗凝剂,专用生理盐水,双针循环进行采集,全血处理血量5000Ml,全血流速30-50ml,ACD抗凝剂与全血比例为11∶1。

3 护理

3.1 单采前护理。

3.1.1 物品准备:CS3000血细胞分离机及一次性消耗管道,16号专用针头,ACD抗凝剂,专用生理盐水,10%葡萄糖酸钙,地塞米松,氧气,心电监护仪,及各种急救药品和器械。

3.1.2 环境准备:血细胞分离室使用前后均予紫外线照射30分钟,地面予500mg/L有效氯湿拖。

3.1.3 病人准备:做好心理护理,向病人介绍血小板分离术的治疗作用极其重要意义及单采过程中的注意事项,消除顾虑,观察病人的血管情况,指导病人保护好浅表大静脉,单采当天清淡饮食,适当多饮水2000ml/日。术前10分钟予10%葡萄糖酸钙20mL口服st预防枸橼酸钠反应。

3.2 单采术中护理

3.2.1 安装管道,连接ACD抗凝剂,专用生理盐水选择血小板单采程序,机器初始化备用,

3.2.2 置病人平卧位,安装好心电监护仪,氧气吸入3升/分,无菌操作原则行肘部大静脉穿刺,穿刺成功予妥善固定,指导病人双肘自然升直,勿乱动,必要时使用约束带。予地塞米松5mg iv st,单采过程中全血流速30-50ml,为保证病人血流畅通,足够血流量。予心理支持,稳定病人的情绪,避免血管收缩,并指导病人进血管侧肢体做有节奏的握拳和松拳动作、必要时予穿刺点上方绑加压袖带加压以保证血流量,单采过程中应密切观察病人的病情变化,如胸闷气急,出冷汗,血压下降等低血容量症状及手足麻木等低血钙症状,如有应予相应处理,本组病例无1例发生低血压症状,有9例发生轻度手足发麻的低血钙症状,予10%葡萄糖酸钙口服后缓解。

3.2.3 单采术后护理:治疗结束,予拔针后局部穿刺点加压包扎60分钟,肢体切勿用力支撑,以防血肿发生,本组病例无1例发生血肿。做好单采记录,观察病人的生命体征,病人的生命体征平稳,用平车护送回病房,继续平卧4-6小时,指导病人多饮水,与床位医生、责任护士严格交班,做到三班交接。回血细胞分离室撤去管道,保养机器。

4 体会

原发性血小板增多症是一种骨髓增殖性疾病,患者出现显著性持续血小板增多及功能障碍,并伴有红细胞和白细胞增多。红细胞压积、血小板计数及血小板功能是影响血液流变学的主要因素[3,4],血小板板单采术能使循环中血小板在短期内下降,已用于治疗原发性血小板增多症患者。在血小板单采术中,护理至关重要,术前做好心理护理,指导病人多饮水,能降低血液粘稠度,避免血管收缩,保证静脉穿刺后血流通畅,机器正常运行,术中密切观察生命体征变化,术后的健康指导,本组病人经我们精心护理,无一例发生严重不良反应,疗效满意。

参考文献

[1] Barbui T,Finazzi G. Management of essential thrombocythemi[J].Clin Rev Oncol/Hematiology, 1999,29;257

[2] 张之南,血液病诊断及疗效标准[M]1 第2版,北京:科学技术出版社,1998,289;290

行政担保书范文第2篇

【摘要】 应用BALB/c裸鼠为移植模型,将在体外扩增的阵发性睡眠性血红蛋白尿症(paroxysmal nocturnal hemoglobinuria,PNH)病人的CD34+CD59+细胞进行移植,研究其增殖能力和重建造血的情况,为实现PNH患者进行临床自体骨髓移植(ABMT)或自体外周血干细胞移植(APBSCT)奠定基础。本研究利用免疫磁珠双阳性分选法,从PNH患者骨髓中分离出足够数量的CD34+CD59+细胞进行体外扩增,并将体外扩增的细胞输注给接受亚致死剂量照射的BALB/c裸鼠。结果显示:移植6周后,用流式细胞术和DNA检测方法均检测到裸鼠骨髓、脾脏和外周血中人的CD45+细胞,而接受PNH病人CD34+CD59+细胞移植后的裸鼠,其血常规指标有一定恢复,但并未完全恢复。结论:PNH病人骨髓CD34+CD59+细胞体外扩增后仍能保持造血祖细胞的生物特性,在照射的裸鼠中能重建造血。

【关键词】 阵发性睡眠性血红蛋白尿症

Nude Mice Intraperitoneally Transfused with Ex Vivo Expanded Bone Marrow CD34+CD59+ Cells from Patients with Paroxysmal Nocturnal Hemoglobinuria

Abstract

Ex vivo expanded human bone marrow CD34+CD59+ cells from patients with paroxysmal nocturnal hemoglobinuria (PNH) were transplanted into BALB/c mice in order to investigate their proliferation ability and reconstruction of hemopoiesis,and to lay the groundwork for clinical ABMT/APBSCT in PNH patients. CD34+CD59+ cells were selected from the bone marrow mononuclear cells in PNH patients by using immunomagnetic positive double sorting. Sublethally irradiated BALB/c mice were transplanted with CD34+CD59+ cells enriched from bone narrow of PNH patients.The results showed that human CD45+ cells were detected in the bone marrow,spleen and peripheral blood of the nude mice by flow cytometry and DNA analysis at 6 weeks post-transplant. Blood routine indicators of nude mice were found to recover to some extent,but did not fully recover. It is concluded that ex vivo expanded bone marrow CD34+CD59+ cells from patients with paroxysmal nocturnal hemoglobinuria could keep their biological characteristics and ability to reconstruct hemopoiesis in irradiated BALB/c mice.

Key words paroxysmal nocturnal hemoglobinuria;CD34+CD59+ cells;cell expansion;nude mice

阵发性睡眠性血红蛋白尿(paroxysmal nocturnal hemoglobinuria,PNH)是一种慢性溶血性疾病,其治疗长期以来一直停留在对症处理上,同种异体骨髓移植是目前唯一有效的根治方法,但由于HLA相合供体的缺乏、异体移植造成的免疫排斥和治疗费用的昂贵限制其广泛应用。因此,寻找有效的根治PNH的疗法是我们临床医生迫切需要解决的问题。由于PNH病人体内正常克隆与异常克隆并存,因此可以考虑对PNH病人进行自体骨髓移植(ABMT)或自体外周血干细胞移植(APBSCT)。PNH病人的造血祖细胞可以在体外收集,应用免疫磁珠双阳性标记的方法将正常细胞与异常克隆分开,对正常细胞在一定条件下进行体外扩增,待化疗和(或)免疫抑制剂尽量减少患者体内异常造血干/ 祖细胞后,再回输给病人重建造血以期根治PNH。我们以前的工作表明,应用免疫磁珠方法对细胞可进行两次分选得到高富集度的CD34+CD59+细胞,并对CD34+CD59+细胞进行体外扩增,但扩增的细胞能否在体内担当重建造血的重任?本研究以BALB/c裸鼠为动物模型对此问题进行了探讨。以裸鼠为动物模型对PNH患者造血细胞进行研究的问题,国内尚未见有报道。本研究的结果将会加深对PNH发病机制的认识,并为PNH根治途径的探讨提供重要的实验依据。

材料和方法

研究对象

8例PNH患者系我院门诊和住院的病人,均按文献〖1]标准确诊,经髂骨穿刺肝素抗凝获取骨髓。

CD34+CD59+细胞的[2]免疫磁珠双阳性法分离富集

常规分离骨髓单个核细胞(BMMNC);CD34单克隆抗体标记及CD59单克隆抗体标记与免疫磁珠结合;用MiniMACS分选CD34+细胞;然后分离CD34+CD59+细胞及CD34+CD59-细胞;再用流式细胞仪测定CD34+CD59-细胞与CD34+CD59+细胞的比例。

细胞体外扩增培养

用本实验室成熟的体外扩增培养体系进行扩增[3],分别于第4、7、10、14天半量换液,补充含相同细胞因子及浓度的IMDM(表1),取出细胞进行有核细胞计数,台盼蓝染色,进行CD34+CD59+细胞比例测定及各系造血祖细胞检测。CD34+CD59+细胞的扩增倍数由下述公式计算得出:

扩增倍数=(扩增后的有核细胞数)× (CD34+CD59+%)÷扩增前的基数

裸鼠骨髓移植

BALB/c裸鼠(中国医学科学院动物所提供),雌雄各半,6-8周龄,体重16-20 g,所有裸鼠在相对无菌及无特定病原体条件下饲养于中国协和医科大学北京协和医院动物房。移植前3小时接受X线照射预处理,照射面积35 cm×35 cm,照距100 cm,剂量率200 cGy/min,照射时间2.00-2.75分钟,总剂量400-550 cGy[4,5]。

实验分组

实验组(8只):经腹腔输注扩增后第7天含1×105的CD34+CD59+细胞;阴性对照组(4只):输注等量的无细胞培养液。Table 1. Source and final concentration of rHGFs(略)

人造血祖细胞植入裸鼠体内的检测

按参考文献〖6]进行输注PNH病人CD34+CD59+细胞后6-8周用硫喷妥钠按50 mg/kg的浓度麻醉处死裸鼠。取外周血、两侧股骨的骨髓细胞及脾脏,用于人CD45+细胞的检测及抽提基因组DNA,以检测人特异的Alu序列,并进行人的造血祖细胞的分析。测定移植后血常规指标的变化,了解裸鼠造血重建情况。

统计学分析

运用SPSS统计软件处理数据,对二者间的比较用t检验,三者间的比较用单因素方差分析或两因素随机区组的方差分析。

结 果

PNH患者骨髓中CD34+CD59+细胞的分选

8例PNH患者应用免疫磁株双阳性分选法分选的CD34+CD59+细胞富集度为(85.73±5.42)%。根据以往的经验,造血祖细胞在扩增到第7天时扩增倍数最高。因此,本实验中细胞体外扩增仅7-10天。CD34+CD59+细胞第7天时扩增19.78±3.11倍。

裸鼠生存情况的观察

照射后存活的裸鼠在2-3周时均出现消瘦、皮肤散在出血点及干燥脱屑,3周后逐渐消失。PNH正常造血祖细胞(CD34+CD59+)体外扩增后输注组裸鼠均存活6周以上。

人特异性CD45+细胞的检测

实验组存活的8只裸鼠中均检测到人源性CD45+细胞,CD45+细胞数在外周血、骨髓及脾脏中分别为(3.10±1.24)%,(18.62±6.14)%,(15.65±2.45)%(图1);在 阴性对照组裸鼠未检测到人CD45+细胞。

转贴于

造血祖细胞在裸鼠体内分化的检测

进一步分析裸鼠骨髓中CD45+的人的细胞可以发现各系表达的标志。在实验中我们检测到B系的表达(CD19+)、T系的表达(CD3+)、髓系的表达(CD14+、CD33+)以及祖细胞的标志(CD34+、CD38+)。它们分别占CD45+细胞的(13.35±1.81)%、(3.50±1.23)%、(6.32±1.32)%、(11.28±1.03)%、(1.54±1.14)%和(4.71±1.12)%(图2)。

特异性基因植入裸鼠的检测

以正常人的阳性标本作为阳性对照,阴性对照未检测到任何特异性条带,实验组小鼠的外周血、骨髓及脾脏组织中均可见到人的特异性Alu序列 (图3)。

移植后裸鼠外周血血常规的检测

阴性对照组在10-13天时的血象表现为三系细胞减低,尤以白细胞和血小板减少为显著。实验组在6-8周时的血常规检查显示,白细胞、血红蛋白及血小板并没有完全恢复,但较阴性对照组明显改善(表2)。阴性对照组白细胞及血小板数同实验组比较有显著差异(P0.05)。Table 2. Comparison of blood routine from BACL/c mice post transplant(略)

讨论

PNH是一种慢性难治的疾病,目前的治疗主要是对症治疗,异基因骨髓移植是目前唯一有效的根治方法。Saso等[7]报道了最大宗的临床试验,有57例病人接受了清髓性异基因骨髓移植,其中48例以HLA相合同胞兄妹为供者的患者,2年生存率为56%;2例以孪生姐妹为供者的患者移植后8年及12年仍然存活;7例无关供者中只有1例移植后5年仍然存活。19例(33.3%)在移植后4个月内死亡。治疗失败的主要原因为移植物抗宿主病(GVHD)和感染。因此,骨髓组织的相容性对移植成功至关重要。由于PNH病人体内呈异常造血与正常造血并存的状态,如果能利用PNH病人自身的正常造血部分进行ABMT或APBSCT,那么既能避免异基因骨髓移植中的GVHD,又不存在相合供体缺乏的问题,而能安全有效地治疗PNH[8]。但欲从骨髓及外周血中收集到足够量的正常造血祖细胞(CD34+CD59+)以供ABMT或APBSCT之需是非常困难的,为此必须对PNH病人的CD34+CD59+细胞进行体外扩增。为了给临床应用提供实验依据,必须将体外扩增后的PNH病人CD34+CD59+细胞移植给体重较小的动物,以了解扩增后的CD34+CD59+细胞在体内的生物学特性。

本研究采用磁珠双阳性分离方法,即有两种抗原标志的同一细胞被分离纯化出来。在无血清体外培养体系中经SCF、IL-3、IL-6、FLT-3、TPO、EPO组合作用后,PNH病人的有核细胞数、CD34+CD59+细胞及CFC均有不同程度的扩增。PNH患者CD34+CD59+细胞扩增第7天时有核细胞数可扩增137.22±8.54倍,CD34+CD59+细胞绝对值可扩增19.78±3.11倍,CFC扩增34.22±6.81倍。我们通过选择适宜的细胞因子组合及适宜的扩增时机,在体外培养的条件下,能够对PNH病人骨髓来源的正常造血祖细胞(CD34+CD59+)在数量上进行有效的扩增,那么扩增后CD34+CD59+细胞是否仍具有向多系分化重建造血的能力?肖娟等[9]对PNH病人骨髓CD34+CD59+的CD34+抗原表达情况及CFC进行研究发现:PNH病人的CD34+CD59+细胞的不同扩增时段(4、7、10、14天)的CD34+CD59+细胞与其相应的CFC相比较,呈正相关,说明扩增后的CD34+CD59+细胞仍具有形成CFU的能力,具备一定的重建造血性能。为进一步将体外扩增的CD34+CD59+细胞应用于临床,我们以BACL/c裸鼠为移植模型,并以该模型为基础,进一步分析了PNH病人造血祖细胞的生物特性。

虽然骨髓被认为是造血的主要部位,但PNH病人体外扩增的CD34+CD59+细胞移植给裸鼠后,其外周血、脾脏中均可检测到人的CD45+细胞,但其比例低于骨髓。应用流式细胞仪进行三色法分析CD45+细胞亚群中各系细胞的表达发现:裸鼠骨髓内的CD19、CD3、CD34、CD33、CD14的表达均为阳性,其中CD3的比例最低,为(2.54±1.14)%,这可能与裸鼠本身具有的T细胞免疫缺陷有关。

PNH病人正常造血祖细胞体外扩增后输注给BACL/c裸鼠,处死裸鼠后对其外周血象的检查发现,三系血细胞均未恢复正常,血红蛋白降低最明显,这可能与PNH病人本身存在的造血衰竭有关,而且体外实验也发现,PNH病人CD34+CD59+细胞的扩增倍数低于正常人。但同阴性对照相比仍有显著差异,说明PNH病人CD34+CD59+细胞经体外扩增后仍能保持造血祖细胞的特性并且能支持造血。对PNH病人骨髓来源的CD34+CD59+细胞进行体外扩增仍具有广阔的前景:①体外培养过程中产生的粒系及巨核系细胞可用于克服移植早期的粒细胞减少及血小板减少症。②所有PNH病人骨髓中造血祖细胞的数量仍少,不能达到基因治疗所需的靶细胞数量,但通过对PNH病人造血祖细胞体外扩增,则可能满足基因治疗的需要。

参考文献

1张之南主编.血液病诊断及治疗标准.第二版,北京:科学出版社,1998: 88-90

2肖娟,武永吉,张之南等.磁珠双阳性分选法在阵发性睡眠性血红蛋白尿症患者骨髓CD34+CD59+细胞体外扩增的应用. 中国实验血液学杂志,2003;11: 179-183

3肖娟,武永吉,张之南等.阵发性睡眠性血红蛋白尿症患者骨髓CD34+CD59+细胞的体外扩增.中华血液学杂志,2002;23: 568-570

4Wermann K,Fruehauf S,Haas R,et al. Human-mouse xenografts in stem cell research. J Hematother,1996;5: 379-390

5赵小英,吴东,徐荣臻. 裸鼠腹腔输注体外扩增人脐血干/祖细胞的研究. 中华血液学杂志,2002;23: 656-657

6Zhang XB,Li K,Fok TF,et al.Cobblestone area-forming cells,long-term culture-initiating cells and NOD/SCID repopulating cells in human neonatal blood: a comparison with umbilical cord blood. Bone Marrow Transplant,2002;30: 557-564

7Saso R,Marsh J,Cevreska L,et al. Bone transplants for paroxysmal nocturnal hemoglobinuria. Br J Haematol,1999;104: 392-396

行政担保书范文第3篇

根据_________________(以下简称借款人)的贷款申请和你行与借款人于_______年_______月_______日签订的贷款合同(协议或契约),你行贷给借款人人民币金额(大写)_______________贷款利率_______,贷款期限自___________至___________

在此,我_______(以下简称担保人)愿为上述合同中的借款人提供担保,并愿为之承担在合同中所有连带经济责任,特郑重声明如下:

第一条 奉担保人是经上级主管部门批准成立、工商行政管理部门发给营业执照的法人。本担保人以足够偿还本担保金额的财产作保证,保证履行本担保书所规定的义务。本担保人并在此声明,本担保书的开立已依法办妥一切必要手续,是合法的、有效的。

第二条 本担保书担保最高金额为贷款的本金人民币_______万元及该贷款的全部应付利息及费用。

第三条 本担保书为五条件不可撤销的担保文件,担保人的任何其他经济行为不改变本担保书的真实性和有效性。

第四条 担保人收到你行出具的借款人无力支付到期应付款项的证明及要求担保人履行担保责任的付款通知后,保证按付款通知规定的付款日,主动五条件向你行付清全部应付担保款项。你行出具的借款人无力支付到期应付款项的证明和要求担保人履行担保责任的付款通知是终结性的,对借款人和担保人均有约束力。

第五条 本担保书不受借款人上级单位任何指令的制约,不受借款人与任何单位签订的任何协议、文件的制约,也不受借款人破产、无力清偿借款、丧失企业资格、更改组织章程及关、停、并、转等各种变化的制约,本担保书始终有效。

只要担保的贷款本金不增加,你行对本担保贷款的合同任何修改或变通执行,均不改变担保人对贷款本息、费用偿付的担保责任。

第六条 担保人若未按你行通知期限偿款,担保人在此授权你行直接借记担保人账户,账号附后。

第七条 担保人如遇撤销、改组、破产或其他原因,失去担保资格和能力时,须提前3个月主动通知你行并推荐继承担保人,经你行确认继承担保人后,担保人协助办理担保责任转移手续。在转移担保责任未办妥前,担保人仍承担担保责任。

第八条 本担保书自签发之日起生效,至借款人或担保人偿清全部借款本息时自动失效。

第九条 本担保书解释于______________银行。

担保人(盖章):________________

法定代表(盖章):______________

担保人地址:____________________

行政担保书范文第4篇

【摘要】 目的: 探讨经皮附睾穿刺取术(PESA)结合单卵细胞浆内显微注射技术(ICSI)治疗梗阻性无症的临床效果. 方法: 根据来源和质量参数分为3组.梗阻性无症患者44个周期采用PESA获得,女方进行常规促排卵并获得成熟卵细胞后,用ICSI技术进行受精(A组);同期严重少弱畸精症患者75个周期(B组); 少弱精症患者45个周期(C组). 比较3组的受精率、卵裂率、优质胚胎率、临床妊娠率和胚胎种植率. 结果: 3组比较5项统计结果均无统计学差异. 结论: 附睾穿刺取到的和体外排出的具有相同的受精和获得优质胚胎的能力,采用PESA结合ICSI技术是治疗梗阻性无症的安全有效方法.

【关键词】 经皮附睾穿刺吸取精术;注射,细胞质内;少症;不育,男(雄)性

0引言

梗阻性无症占男性不育的5%~15%,是男科领域的一个难题. 以前这类患者缺乏有效的治疗手段. 直到近十余年来ICSI技术的出现和发展,才使梗阻性无症患者有机会生育自己的后代. 对于严重男性因素的不育患者,通过ICSI (intracytoplasmic sperm injection)技术获得后代的机会,要远大于除供精人工受精以外的其他治疗措施[1]. 我们采用PESA(percutaneous epididymal sperm aspiration)取精方法结合ICSI技术治疗梗阻性无症,取得了很好的疗效.

1对象和方法

1.1对象200405/200707在我中心接受ICSI技术助孕治疗的164个周期,根据来源和质量参数分为3组: 男方采用经皮附睾穿刺吸取少量的无症患者44个周期作为A组(PESA组),同期严重少弱畸精症患者75个周期作为B组,轻度少弱畸精症患者45个周期作为C组. 入选PESA组的患者符合如下条件: ① 至少2次射出经离心后未见;② 双侧总体积>30 mL;③ 血清FSH值在正常范围;④ 活检结果提示曲细精管内可见各级生精细胞及成熟;⑤ 染色体核型分析及Y染色体微缺失筛查结果均正常.3组的女方均为原发性不孕症,辅助生殖前相关检查未见异常.

1.2方法

1.2.1促超排卵及卵母细胞收集及处理按文献[2]的方法进行.

1.2.2获取和处理PESA组常规消毒外生殖器,20 g/L盐酸利多卡因封闭精索及局部麻醉阴囊皮肤,将附睾固定于阴囊皮下,用1 mL注射器接16 G套管针并吸取0.2 mL处理液,经皮刺进附睾头部,持续低负压抽吸附睾液,直至取得略浑浊的附睾液为止. 将吸出的液体滴入培养皿并在显微镜下观察. 见活动后停止取精,将收集到的经微Isolate梯度法处理或直接洗涤后备用.冷冻保存时将取到的附睾液和等量的冷冻保护剂充分混匀,将混合液分装入冻存管中. 程序冷冻后置于液氮罐保存.解冻时先置于37℃水浴,完全解冻后再行处理. B组和C组取精,采用上游法或Isolate梯度法处理.

1.2.3显微操作显微操作在NIKON TE300配Hoffman调制反差光学系统、Eppendorff显微操作系统下放大200倍条件下进行. 选择活动力强、形态正常的用注射针按压尾部直至其失去活动力,将1条制动后的吸入注射针. 选择MⅡ期卵母细胞用固定针固定在第一极于12点钟或6点钟位置上,将吸入制动的注射针从卵母细胞3点钟方向刺入,回吸少量卵浆,卵膜破裂后,将注入卵浆内.

1.2.4胚胎培养及胚胎移植注射后16~20 h在倒置显微镜下观察受精情况. 有雌、雄原核和第一、第二极体者为正常受精的合子,正常受精的合子继续置于37℃,50 mL/L CO2培养箱培养. 取卵后48~72 h,选择质量优良的2~3个胚胎移植入子宫腔. 其余符合冷冻条件的胚胎冷冻保存.

1.2.5黄体支持和监测胚胎移植后,用HCG或黄体酮维持黄体功能,于移植后15 d查尿或血HCG,若阳性则于停经7 wk行B超检查,见孕囊及原始心管搏动诊断为临床妊娠,继续随访至妊娠结束.

统计学处理: 采用SPSS10.0软件对数据进行处理,行方差分析和χ2检验.

2结果

2.1患者一般情况共治疗164个周期,取到1835个卵子,平均每周期取卵数为11.2个. 在PESA组37个周期患者采用附睾穿刺吸取的新鲜,7个周期采用经冻融的附睾;严重少弱畸精症患者和轻度少弱畸精症患者均采用取到的新鲜. 3组患者在女方年龄、不孕时间、促超排卵(COH)天数、Gn用量、注射hCG日E2值、注射hCG日子宫内膜厚度、平均MⅡ卵数、平均受精数、平均胚胎数、平均优质胚胎数、平均移植胚胎数等方面比较均无统计学差异(P

2.2患者临床结局共对164个取卵周期的1559个成熟卵子进行ICSI显微操作,有1288个卵子受精,平均受精率为82.6%,结果68例临床妊娠,取卵周期临床妊娠率为41.46%. 由表2可见,3组患者在受精率、卵裂率、优质胚胎率、临床妊娠率、胚胎种植率等方面比较均无统计学差异(P>0.05). 表2临床结局比较

3讨论

1992年世界首例ICSI“试管婴儿”诞生,自此彻底改变了男性不育症的治疗策略,成为治疗多种男性不育症的主要手段,是男性不育治疗新的里程碑[3]. ICSI技术使精卵细胞无需经历复杂的受精过程,直接将注入卵细胞内,形成受精胚胎. 该技术对数量、活力、受精能力的要求极低,是治疗包括梗阻性无症在内的男性因素所致配子传递障碍的有效手段. 此外,对于部分非梗阻性无症患者,可以先通过MESA或TESE手术获得;部分重度畸形症的患者,可以在显微镜下选择形态活力正常的,最后通过ICSI技术达到受精的目的.

不同来源和参数的对ICSI结局是否产生影响目前尚无定论. 多数的文献报道[4-5]显示,只要有活的,ICSI技术就可以克服与受精失败相关的形态的、活动力的和其他方面的缺陷,使自然情况下不能穿过透明带的、活动力差的获得受精、卵裂及妊娠[6]. 我们的研究结果显示: 附睾与轻度少弱畸精和严重少弱相比,3组的受精率、优质胚胎率、临床妊娠率和胚胎种植率均无统计学差异.

在中产生,在附睾中贮存并进一步成熟,获得运动能力、识别卵子透明带的能力以及与卵子结合的能力. 在某些先天性或者获得性因素作用下,引起精道梗阻,导致男性配子传递障碍,即梗阻性无症. 通过PESA技术可以获得成熟的,是解决梗阻性无症患者来源问题的重要方法. 我中心采用18 G套管针穿刺附睾,针尖所在位置手指可触及,穿刺位置及深度明确可靠,刺破的附睾小管数量较多,获取的数量相对较多,避免了反复穿刺所造成的过度损伤,操作时间短,患者痛苦小,可以获得足量高质量的. 另外,由于PESA有一定的创伤性,并且再次穿刺有失败的可能性,所以我们在行ICSI操作之前,常规进行诊断性附睾穿刺取术,在事先明确患者有并予以冷冻保存的情况下,才安排女方进入促排卵周期,从而最大程度上降低了再次附睾穿刺失败的风险.

ICSI在临床上的成功应用为男性不育的治疗提供了一种有效手段. 但同时我们必须认识到,大约10%~13%的无症是由于染色体或基因的异常引起的[7]. ICSI技术在使这些患者实现当父亲的愿望的同时,也增加了将异常的遗传信息传递给子代的风险. 因而在行ICSI助孕治疗之前对男性患者进行遗传学筛查和咨询是十分必要的. 我们对PESA组患者在行ICSI之前均进行了染色体核型分析以及Y染色体微缺失筛查,结果无异常发现.

总之,我们的研究结果表明,采用PESA结合ICSI技术可以有效地帮助梗阻性无症获得临床妊娠. 但就其远期影响,特别是对通过此方式出生的个体的远期影响,仍需足够长的时间和足够多的样本数予以说明.

【参考文献】

[1] ESHRE Capri Workshop Group. Intracytoplasmic sperm injection (ICSI) in 2006: Evidence and Evolution[J]. Hum Reprod Update, 2007, 13(6):515-526.

[2] 王晓红,罗亚宁,姚元庆. 卵母细胞浆内单显微注射技术的临床应用[J]. 陕西医学杂志, 2005, 33(11): 977.

[3] Palermo G, Joris H, Devroey P, et al. Pregnancy after intracytoplasmic injection of a single spermatozoon into an oocyte[J]. Lancet, 1992, 340(8810):17-18.

[4] 李满,庄广伦,李蓉,等. 用射出、附睾、显徽授精治疗男性不育[J]. 中华外科杂志, 2000, 38(4): 280-282.

[5] Sukcharoen N, Sithipravej T, Promviengchai S, et al. Comparison of the fertilization rate after intracytoplasmic sperm injection (ICSI) using ejaculated sperms, epididymal sperms and testicular sperms[J]. J Med Assoc Thai, 1998, 81(8):565-571.

[6] Nagy ZP, Liu J, Joris H, et al. The result of intracytoplasmic sperm injection is not related to any of the three basic sperm parameters[J]. Hum Reprod, 1995, 10(5):1123-1129.

行政担保书范文第5篇

不可撤销现汇担保书

银行:

根据 公司 号文的申请,贵行同意向其提供外汇贷款(大写) ,本保证人愿意为该项贷款担保。特此开立本保证书,向贵行担保下列各项:

一、本保证书为无条件不可撤销的保证书,担保金为 元整(大写),以及贷款项下所发生的借款利息和费用。

二、本保证书保证归还借方在 字第 号借款合同项下不按期偿还的全部或部分到期借款本息,并同意在接到贵行书面通知后十四天内代为偿还借款方所欠借款本息和费用。如我单位不能履行上述担保责任,接受你行委托我单位开户行从我单位账户中扣收全部借款本息和费用。

三、本保证书在贵行同意借款方延期还款时继续有效。

四、本保证书是一种连续担保和赔偿的保证,不受借款方接受上级单位任何指令和借款方与任何单位签订的任何协议、文件的影响,也不因借款方是否破产、无力清偿借款、丧失企业资格、更改组织章程以及关、停、并、转等各种变化而有任何改变。

五、本保证人是经上级主管部门批准成立、工商行政管理部门发给营业执照的法人,并有足够偿还借款的财产作保证,保证履行本保证书规定的义务。

六、本保证书自签发之日起生效,至还清借款方所欠的全部借款本息和费用时自动失效。

保证人:(公章)

法定代表人:(签章)

保证人地址:

保证人开户银行及账号:

担保的方式

1.根据法律规定,担保有五种方式,即保证、抵押、质押、留置、定金。

2.需要注意的是:

2.1当事人在为合法的债权提供担保时,只能提供以上这五种担保,而不能创设新的担保形式。

2.2五种担保形式所产生的法律效果有以下区别:

2.2.1保证产生的权利为债权,不具有优先受偿性;

2.2.2定金产生的权利也是债权,同样不具有优先受偿性;

2.2.3抵押、留置、质押取得的是担保物权,对担保物及其变现所得的价款具有优先受偿的权利。